Misc - 荒木　良一

科学教育指導論のあゆみ

荒木良一, 井嶋博, 古賀庸憲

和歌山大学教育学部紀要. 教育科学   74   61 - 67   2024年02月  [査読有り]

DOI

野外調査を想定したバニラ（Vanilla planifolia）の DNAの保存・運搬と PCR条件の最適化

荒木良一, 田中樹 (担当区分： 筆頭著者,　責任著者 )

作物研究   ( 68 ) 74 - 74   2023年06月

ダイズコアコレクションのニッケル含量の解析

井谷圭利・井伊博行・荒木良一

日本育種学会 第136回講演会 ( 日本育種学会 )    420 (p.99)   2019年09月

作物の鉄吸収と蓄積

荒木良一 (担当区分： 筆頭著者,　責任著者 )

第43回 日本鉄バイオサイエンス学会学術集会, 日本鉄バイオサイエンス学会, 京都市・稲盛記念会館     p. 29   2019年09月  [招待有り]

和歌山市で育てた5品種の亜麻の種子成分の品種間差ー亜麻（Linum usitatissimum）の観光資源としての可能性の検討

畠中知子, 中元朋美, 増田亮一, 荒木良一, 杉本敏男

第39回 種子生理生化学研究会年会 ( 種子生理生化学研究会 )    A-2   2018年11月

異なる栽培方法と環境条件下におけるソルガム（K8品種）の栽培特性

宮武 千波, 関 真由子, 杉原 創, 宮嵜 英寿, 荒木 良一.

日本育種学会 第134回講演会 ( 日本育種学会 )    P072   2018年09月

地域社会と紡ぐ「六人称の研究」.

石山俊、宮嵜英寿、荒木良一.

Humanity and Nature, 65, 地球研ニュース     5-8.   2017年03月

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2017年1月に行なったシンポジウムの企画・開催をまとめるとともに、これからの地域研究について記述した。

食と暮らしの研究会」の活動報告（2016年度）

荒木良一、宮嵜英寿、石山俊、岸上光克、大坪史人.

学芸（和歌山大学学芸学会） ( 和歌山大学学芸学会 )  63   9月13日 - 13   2017年03月

4-2-2 合成デオキシムギネ酸添加によるイネのアルカリ耐性付与と硝酸同化への影響(4-2 植物の微量栄養素,2015年度京都大会)

荒木 良一, 向坂 佳代子, 難波 康祐, 村田 佳子, 村田 純

日本土壌肥料学会講演要旨集 ( 一般社団法人日本土壌肥料学会 )  ( 61 ) 65 - 65   2015年09月

天然キレート剤、ムギネ酸類の新たな可能性.

村田純、荒木良一、村田佳子、難波康祐

バイオサイエンスとインダストリー73(6)     462-466   2015年07月  [招待有り]

オオムギのムギネ酸類金属錯体輸送体の解明.

荒木良一.

バイオサイエンスとインダストリー 70(4)   70 ( 4 ) 280-281 - 281   2012年07月  [招待有り]

メチオニン由来グルコシノレート生合成を制御する転写因子の同定と機能解析 II

荒木 良一, 澤田 有司, 鈴木 あかね, 小川 俊也, 斉藤 和季, 平井 優美

日本植物生理学会年会およびシンポジウム 講演要旨集 ( 日本植物生理学会 )  2008 ( 0 ) 124 - 124   2008年

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メチオニン由来グルコシノレート（MET-GSL）生合成にかかわる2つの転写因子<I>PMG1</I>, <I>PMG2</I>のダブルノックアウト体（<I>pmg1pmg2</I>）ではMET-GSLが検出されないことが明らかとなった(本大会 澤田ら発表 )。マイクロアレイ解析によると新規候補転写因子<I>PMG3</I>の発現が<I>pmg1pmg2</I>の葉で顕著に低下していた。本研究では<I>PMG3</I>の機能解明に向けて、液体振とう培養したシロイヌナズナ実生における<I>PMG1</I>、<I>PMG2</I>および<I>PMG3</I>の発現量を定量的PCRにより詳細に解析した。MET-GSLが減少している<I>pmg1</I>株における<I>PMG2</I>, <I>PMG3</I>の発現量はそれぞれ野生型の30%, 10%であった。またMET-GLSが全く検出されない<I>pmg1pmg2</I>株における<I>PMG3</I>の発現量は野生型の5%であった。一方、MET-GSLの減少が見られなかった<I>pmg2</I>株における<I>PMG1</I>, <I>PMG3</I>の発現量はそれぞれ野生型の100%, 40%であった。以上の結果より、<I>PMG1</I>が主たる制御因子であること、および<I>PMG3</I>は<I>PMG1</I>, <I>PMG2</I>の制御下にあり、MET-GSL生合成制御に関わっていることが示唆された。現在、<I>PMG3</I>のノックアウト株も用いて、様々な条件下での発現解析を行っている。

Expression of rice (Oryza sativa L.) genes involved in high-affinity nitrate transport during the period of nitrate induction (vol 56, pg 295, 2006)

Ryoichi Araki, Hiroshi Hasegawa

BREEDING SCIENCE ( JAPANESE SOC BREEDING )  57 ( 1 )   2007年03月

グルコシノレート生合成遺伝子群を制御する転写因子のオーム科学的アプローチによる同定

平井 優美, 杉山 健二郎, 澤田 有司, 峠 隆之, 鈴木 あかね, 大林 武, 荒木 良一, 櫻井 望, 鈴木 秀幸, 青木 考, 西澤 治, 柴田 大輔, 斉藤 和季

日本植物生理学会年会およびシンポジウム 講演要旨集 ( 日本植物生理学会 )  48 ( 0 ) S67 - S67   2007年

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我々は硫黄栄養欠乏条件下でシロイヌナズナのトランスクリプトームとメタボロームの経時的変化を調べ、一括学習自己組織化マッピングにより共発現・共蓄積する遺伝子群・代謝物群を明らかにした。既知のグルコシノレート（GSL）生合成酵素遺伝子群が硫黄栄養欠乏条件下で共発現していることがわかり、これらと共発現している機能未知遺伝子は同様にGSL生合成に関与すると推察した。この考えに基づき、GSL生合成遺伝子群を正に制御する転写因子の候補遺伝子を見出した。AtGenExpressプロジェクトで取得された1388アレイデータを用いた共発現解析により、この遺伝子はメチオニン由来GSL（MET-GSL）生合成に関与する酵素遺伝子群とのみ共発現していることがわかり、これらの遺伝子群を特異的に制御すると推定された。当該遺伝子ノックアウト変異株、および過剰発現T87培養細胞のトランスクリプトームとGSL蓄積パターンを解析した結果、実際にこの転写因子はMET-GSLの生合成を正に制御し、トリプトファン由来GSLの生合成には関与しないことが示された。本発表ではMET-GSL生合成の制御メカニズムについても考察する。

アミノ酸類縁体、ムギネ酸類の植物生長促進メカニズムの解明.

荒木良一、村田佳子、村田純.

Riニュース（京都大学 環境安全保健機構 放射線管理部門 放射性同位元素総合センター）   60   8-10.   1905年07月